Séminaire de microscopie des champignons, Belgique 2017
Catégories:
Microscopie
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Formation
01 Jan 2018 | Par: Claude Kaufholtz-Couture
Présentation
Du 12 au 18 novembre 2017, l’Association des mycologues français de Belgique (l’A.M.F.B.) a organisé un séminaire de microscopie consacré aux champignons ; et c’est dans un paysage magnifique, au Domaine de Massembre à Heer-Agimont, dans la province de Namur, région wallonne en Belgique, que s’est déroulé l’évènement.
Résumé et remerciements
Un petit mot de remerciement avant de revenir dans le quotidien empressé. Je tenais à remercier toute l’équipe de l’A.M.F.B., pour cette semaine de Séminaire consacré à la microscopie des champignons. Comme anticipé et supposé de ma part, cela s’est avéré très instructif ; il s’agit à coup sûr d’un élément positif majeur dans ma formation de microscopiste des champignons. Tout y était : de bons thèmes, des sujets intéressants, un intervenant pédagogue d’exception, de nouvelles techniques surprenantes et de la convivialité, ce qui fait que nous avons passé une semaine bénéfique, agréable, que je peux qualifier sans hésitation d’exceptionnelle. Bravo au comité organisateur de l’A.M.F.B., constitué de Françoise Draye, Claude Quintin, Norbert Bastien, Serge Defays, et au formateur, Marcel Lecomte, pour cette réussite et ce partage. Le séminaire m’a apporté une solide correction de parcours et une mise à niveau incomparable dans mon apprentissage de la microscopie des champignons. Ce fut un réel plaisir que d’y participer.
Paticipants à ce séminaire de microscopie des champignons, Belgique, 2017
De gauche à droite :
Debouts rang arrière : J. C. Bocquenet, Jean Leclercq, Gérard Sick, Norbert Valmorbida, Jean-Jacques Lefrançois, André Burnotte, Dominique Bangels, Julien Thurion, ?, Françoise Grasperger, Christelle Gérard, Patrice Messin et Gérard Rivet (casquette rouge);
Debouts rang médian : Patrick Degroote, Michael Vincent, Michèle Cholet, Christine Lempereur, ?, Norbert Bastien, Bertrand Lartigues, Christian Verpoorte, Christine Hoper, Christiane Roy;
Accroupis : Claude Quintin, Françoise Draye, Serge Defays, Marcel Lecomte, Claude Kaufholtz-Couture, Jean-Luc Dassy, Patrice Baumgart, Marie-Paule Vigneron
Programme des activités et exposés pratiques vus lors du Séminaire organisé par l’A.M.F.B., à Massembre, du 12 au 18 novembre 2017
par Marcel Lecomte
Voici une liste informative des diverses techniques qui ont été abordées durant ce séminaire.
- Vérification du centrage de votre condensateur
- L’indispensable : « laver » une préparation microscopique
- Montage de la première lame : une technique essentielle en mycologie : la dissociation – la recherche de boucles dans les hyphes
- Les milieux d’observation (préparations extemporanées)
- Les colorations orthochromatiques (rouge Congo, bleus divers et autres)
- Basides, cystides et basidiospores
- Dissociation, observation, coloration (avec lavage) d’un basidiomycète
- Asques et ascospores
- Dissociation, observation, coloration (avec lavage) d’un ascomycète
- Le réactif de Melzer : réaction amyloïde ou dextrinoïde chez les Basidiomycètes
- Lugol ou IKI : réaction amyloïde ou dextrinoïde chez les asco. – coloration de la nasse apicale
- Une coloration métachromatique : les spores de Macropeliota
- Les réactions sulfoaldéhiques (Russules et lactaires) : la sulfovanilline
- Préparation et examen d’une cuticule : les piléocystides
- Le sulfobenzaldéhyde et la cuticule des russules
- Les incrustations acido-résistantes et la fuchsine de Ziehl
- Les incrustations acido-résistantes selon Clémençon
- Le collage des spores et leur éventuelle coloration
- La technique du frottis appliquée au montage des spores : Merckoglass / Aquatex
- Traitement d’un exsiccatum pour examen microscopique
- Les différents types d’hyphes, dont les thromboplères
- Les techniques de double coloration (RCF SDS + Phloxine B – RC SDS + noir de chlorazol)
- Utilisation de la nigrosine ou du noir de chlorazol pour l’observation des éléments hyalins
- Mise en évidence de la trame et de la cuticule d’un basidiomycète
- Comment visualiser la forme des spores des inocybes et des entolomes ?
- Les rouilles - les oïdiums – les Charbons
- Ascomycètes et Fungi Imperfecti : ascospores et conidies
- Moisissures et cultures en milieu artificiel (boîtes de pétri)
- Les granulations sidérophiles (utilisation du carmin acétique)
- La microscopie des Aphyllophorales (I) : coupes et coloration
- La microscopie des Aphyllophorales (II) : les types d’hyphes
- Microscopie des Lichens
- Les Gloméromycètes
- Des endomycorhizes : les pelotes orchidoïdes
- Les cystides trabéculaires et les pseudoparaphyses dans le genre Coprinus
- Les pigments cuticulaires : mise en évidence
- Gliosphex (Hohenbuehelia), chlamydospores (Lentinellus) et toxocystes (Pleurotus)
- La trame d’un ascomycète (coupe transversale)
Meilleures salutations de Québec !
Claude Kaufholtz-Couture
Fungiquebec